数据分析3.1-stringtie 注释新基因-鉴定lncRNA
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参考技术A Error: input file –e cannot be found!Aborted (core dumped)
-e选项是只组装参考基因组里有的,不进行新基因的预测,提高组装速度。为什么呢能用呢?
转录组入门:了解参考基因组及基因注释
任务列表
- 1.在UCSC下载hg19参考基因组;
- 2.从gencode数据库下载基因注释文件,并且用IGV去查看感兴趣的基因的结构,比如TP53,KRAS,EGFR等等。
- 3.截图几个基因的IGV可视化结构
- 4.下载ENSEMBL,NCBI的gtf,也导入IGV看看,截图基因结构
- 5.了解IGV常识
在UCSC下载hg19参考基因组
hg19、GRCH38、 ensembl75这3种基因组版本应该是大家见得比较多的了,国际通用的人类参考基因组,其实他们储存的是同样的fasta序列,只是分别对应着三种国际生物信息学数据库资源收集存储单位,即NCBI,UCSC及ENSEMBL各自发布的基因组信息而已。有一些参考基因组比较小众,存储的序列也不一样,比如BGI做的炎黄基因组,还有DNA双螺旋结构提出者沃森(Watson)的基因组,还有2016年发表在nature上面的号称最完善的韩国人做的基因组。前期我们先不考虑这些小众基因组,主要就下载hg19和hg38,都是UCSC提供的,虽然hg38相比hg19来说,做了很多改进,优点也不少,但因为目前为止很多注释信息都是针对于hg19的坐标系统来的,我们就都下载了,正好自己探究一下。也顺便下载一个小鼠的最新版参考基因组吧,反正比对也就是睡个觉的功夫,顺便分析一下结果,看看比对率是不是很低。
mkdir rna_seq/data/reference && cd rna_seq/data/reference mkdir -p genome/hg19 && cd genome/hg19 # nohup wget http://hgdownload.cse.ucsc.edu/goldenPath/hg19/bigZips/chromFa.tar.gz & # nohup 是永久执行,& 是指在后台运行。nohup COMMAND & 这样就能使命令永久的在后台执行 nohup axel http://hgdownload.cse.ucsc.edu/goldenPath/hg19/bigZips/chromFa.tar.gz & tar zvfx chromFa.tar.gz cat *.fa > hg19.fa rm chr*.fa
从gencode数据库下载基因注释文件,并且用IGV去查看感兴趣的基因的结构
下载基因注释文件
官网:http://www.gencodegenes.org/releases/26lift37.html
wget ftp://ftp.sanger.ac.uk/pub/gencode/Gencode_human/release_26/GRCh37_mapping/gencode.v26lift37.annotation.gtf.gz gzip -d gencode.v26lift37.annotation.gtf.gz
下载安装IGV、BEDtool
官网:http://software.broadinstitute.org/software/igv/download(下载 Binary Distribution 版本)
wget https://github.com/arq5x/bedtools2/releases/download/v2.26.0/bedtools-2.26.0.tar.gz tar -zxvf bedtools-2.26.0.tar.gz cd bedtools2 make
截图几个基因的IGV可视化结构
批量截图:TP53,KRAS,EGFR
grep -w ‘gene‘ gencode.v26lift37.annotation.gtf | grep -w ‘TP53‘ | cut -f 1,4,5 >> gene.bed grep -w ‘gene‘ gencode.v26lift37.annotation.gtf | grep -w ‘KRAS‘ | cut -f 1,4,5 >> gene.bed grep -w ‘gene‘ gencode.v26lift37.annotation.gtf | grep -w ‘EGFR‘ | cut -f 1,4,5 >> gene.bed ~/biosoft/bedtools2/bin/bedtools igv -i gene.bed > Bach_sanpshot.txt
grep是一个多用途的文本搜索工具,linux中使用非常频繁,并且使用很灵活,可以是变量,也可以是字符串。最基本的用法有以下两种:
- 1.搜索内容中无空格,可以直接执行grep命令,比如:grep pass a.txt,表示在a.txt文件中搜索pass所在的行
- 2.如果搜索内容中有空格,则需要使用单引号或者双引号把搜索内容引起来,比如:grep "hello all" a.txt或者grep ‘hello all‘ a.txt,如果不加单双引号,则提示错误,无法识别,因为不加引号,直接grep hello all a.txt,表示在all和a.txt中搜索hello,这肯定是不对的
grep -w option file:精确搜索,可以说准确性搜索,比如:grep -w b* a.txt:此命令执行时,*不会默认为任何字符,只表示字面意思,就是一个*字符
管道命令操作符:”|”,它仅能处理经由前面一个指令传出的正确输出信息,也就是 standard output 的信息,对于 stdandard error 信息没有直接处理能力。然后,传递给下一个命令,作为标准的输入 standard input
cut 命令从文件的每一行剪切字节、字符和字段并将这些字节、字符和字段写至标准输出。如果不指定 File 参数,cut 命令将读取标准输入。必须指定 -b、-c 或 -f 标志之一。使用 -f 选项提取指定字段
下载ENSEMBL,NCBI的gtf
axel ftp://ftp.ensembl.org/pub/grch37/release-89/gtf/homo_sapiens/Homo_sapiens.GRCh37.87.gtf.gz axel ftp://ftp.ensembl.org/pub/grch37/release-89/gtf/homo_sapiens/Homo_sapiens.GRCh37.87.chr.gtf.gz
axel ftp://ftp.ncbi.nlm.nih.gov/genomes/Homo_sapiens/ARCHIVE/ANNOTATION_RELEASE.105/GFF/ref_GRCh37.p13_top_level.gff3.gz axel ftp://ftp.ncbi.nlm.nih.gov/genomes/Homo_sapiens/ARCHIVE/ANNOTATION_RELEASE.105/GFF/ref_GRCh37.p13_scaffolds.gff3.gz
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variant变异 | Epigenome表观基因组 | Disease-susceptible gene 疾病易感基因